In den letzten Jahren sind Nanoporen zu einem wichtigen Werkzeug in der Biotechnologie geworden, vor allem in der Biosensorik und DNA-Sequenzierung. Die Fähigkeit Nanoporen mit maßgeschneiderten Eigenschaften und Funktionen zu konstruieren, ist der Schlüssel zu ihrer biotechnologischen Entwicklung und liefert neue grundlegende Erkenntnisse über ihre Wirkungsmechanismen. Bis heute wurden die meisten konstruierten Nanoporen mit rationalen, struktur-basierten Ansätzen realisiert, während genetische Durchmusterungsverfahren nicht weit verbreitet sind. Um diese technologische Lücke zu schließen, wurde ein Durchmusterungsverfahren entwickelt, das auf genetisch kodierten fluoreszierenden Proteinsensoren basiert und eine hochauflösende und quantitative Analyse der Funktion von Nanoporen in E. coli ermöglicht. Die Leistungsfähigkeit dieses Verfahrens wurde durch die Analyse molekularer Merkmale und Funktionen des Bakteriophagen Pinholins S21-68 in hochauflösenden genetischen Durchmusterungen auf verschiedenen Plattformen demonstriert und durch hochauflösende elektrische Aufzeichnungen ergänzt. Diese Klasse von Membranpeptiden ist Teil des Lebenszyklus des Bakteriophagen und sehr effizient bei der Initiierung der Zelllyse. Die detaillierte Analyse der ersten Transmembrandomäne demonstrierte die Schlüsselfunktionen einzelner Aminosäuren, bei denen vor allem positiv geladene Reste zur Nanoporen Stabilisierung beitragen. Darüber hinaus wurden mehrere verschiedene Nanoporen mit diesem System getestet, um die Erweiterbarkeit des Verfahrens für weitere Anwendungen zu zeigen.